【產品名稱】麥ubiquitine基因PCR試劑盒
【包裝規格】 50T/盒
【產品方法】實時熒光PCR法
【預期用途】
適用于檢測,可用于臨床麥ubiquitine基因感染的輔助診斷,但不作確診使用。
麥ubiquitine基因PCR試劑盒【檢驗原理】
本試劑盒采用TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,設計一對麥ubiquitine基因特異性引物,結合一條特異性探針,利用相應儀器對PCR 過程進行實時監測,實現檢測結果的定性分析,用于臨床上對可疑感染者的病原 學診斷。
【主要組成成份】
反應液、酶液、陽性質控品、陰性質控品。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。
【保存和運輸】上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1 樣品處理(樣本處理區)
1.1樣本前處理
血液、體液和棉拭子樣本取100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。
1.2 核酸提取
推薦采用核酸提qu或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提qu,請按照試劑說明書進行操作。
2. 試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;反應管 數每滿 10 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | RP反應液 | 酶液 |
用量(樣本數為N) | 20μL | 1μL |
3.加樣(樣本處理區)
將步驟1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短 暫離心。
4.PCR 擴增(核酸擴增區)
4.1將待檢測反應管置于熒光定量PCR 儀反應槽內;
4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為25μL; 熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。
4.3推薦循環參數設置:
步驟 | 循環數 | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1cycle | 95℃ | 10min | 否 |
2 | 40cycles | 94℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
2.結果分析判定
2.1 結果分析條件設定設置Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像 調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。
2.2 結果判斷陽性:檢測通道Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線; 可疑:檢測通道 35值≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35值≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性; 陰性:樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。
3.質控標準
陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示; 陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。
4.檢測方法的局限性
1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;
2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
3.陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;
4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;
5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;
6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1.所有操作嚴格按照說明書進行;
2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完quan混勻并短暫離心;
3.反應液應避光保存;
4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;
6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;
7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。
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